单胺氧化酶（Monoamine Oxidase，MAO）试剂盒说明书
分光光度法50管/48样
注 意 ：正式测定之前选择2-3个预期差异大的样本做预测定。
单胺氧化酶（Monoamine Oxidase，MAO）试剂盒测定意义：
MAO(EC1.4.3.4) 主要存在于脊椎动物的各种器官，特别是分泌腺、脑、肝脏，在无脊椎动物、豆类的芽等植物中也存在催化单胺类物质代谢，含量较低，具有重要的生理功能，其活性能反映肝纤维化的程度。此外，MAO活性异常导致细胞内单胺类神经递质运转出现紊乱，从而引发多种病症。
测定原理：
MAO催化单胺类底物脱氨生成相应的醛，进一步氧化成酸；底物在360nm处有特征吸收峰，测定360nm光吸收下降的速率，计算MAO活性。
自备实验用品及仪器：
天平、低温离心机、可见分光光度计、1 mL玻璃比色皿、蒸馏水。
试剂组成和配制：
提取液一：液体50mL×1瓶，4℃保存。
提取液二：液体50mL×1瓶，4℃保存。
试剂一：液体100mL×1瓶，4℃保存。
试剂二：液体5mL×1瓶，4℃避光保存。
粗酶液提取：
1. 组织：按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1mL提取液一）进行冰浴匀浆，10000g，4℃，离心10min，弃沉淀；把上清转移到另一预冷的离心管，10000g，4℃，离心30min，弃上清；加入1.0 mL预冷的提取液二，震荡混匀，16000g，4℃，离心40min，弃上清；沉淀加入预冷的1.0 mL 试剂一，震荡混匀，即粗酶液（可用于可溶性蛋白浓度测定）取上清置于冰上待测。
2. 细菌、真菌：按照细胞数量（104个）：提取液体积（mL）为500~1000：1的比例（建议500万细胞加入1mL提取液），冰浴超声波破碎细胞（功率300w，超声3秒，间隔7秒，总时间3min）；然后10000g，4℃，离心10min，弃沉淀；把上清转移到另一预冷的离心管，10000g，4℃，离心30min，弃上清；加入1.0 mL预冷的提取液二，震荡混匀，16000g，4℃，离心40min，弃上清；沉淀加入预冷的1.0 mL 试剂一，震荡混匀，即粗酶液（可用于可溶性蛋白浓度测定），取上清置于冰上待测。
3. 血清：直接测定。
测定操作表：
| 空白管 | 测定管 |
酶液（µL） |
| 100 |
试剂一（µL） | 900 | 800 |
试剂二（µL） | 100 | 100 |
混匀，1 mL玻璃比色皿，对照管调零，测定360nm处吸光值A1，然后37℃水浴60min，测定360nm处吸光值A2，△A= A1- A2。 |
注意：空白管只需测定一次。
MAO活性计算公式：
1、按蛋白含量计算
酶活定义：37℃，pH7.6时，每毫克蛋白质1min内转化1nmol底物的酶量为一个酶活单位。
DAO活性（nmol/min / mg prot）= 
×V反总÷（V样×Cpr）÷T= 114×ΔA÷Cpr
2、按样本质量计算
酶活定义：37℃，pH7.6时，每克样品1min内转化1nmol底物的酶量为一个酶活单位。
DAO活性（nmol/min / g 鲜重）=×V反总÷（V样÷V样总×W）÷T = 114×ΔA÷ W
3、按照细胞数量计算
酶活定义：37℃，pH7.6时，每104 个细胞1min内转化1nmol底物的酶量为一个酶活单位。
DAO活性（nmol/min / 104 cell）= ×V反总÷（V样÷V样总×细胞数量）÷T
= 114×ΔA÷细胞数量
4、按照液体体积计算
酶活定义：37℃，pH7.6时，每升血清1min内转化1nmol底物的酶量为一个酶活单位。
DAO活性（nmol/min /L）=×V反总÷V样=114000×ΔA
ε：底物摩尔消光系数，1.46 L/mol /cm；d：比色皿光径，1cm；V反总：反应总体积，1mL；V样：反应中样本体积，0.1mL；V样总：加入提取液体积，1mL；Cpr：样本蛋白浓度，mg/mL；T：反应时间，60min，W：样本质量，g
单胺氧化酶（Monoamine Oxidase，MAO）试剂盒注意事项：
1、吸光度变化应该控制在0.01~0.8之间。否则加大样品量或稀释样品，注意计算公式中参与计算的稀释倍数要相应改变。
2、样品蛋白质含量需要另外测定。
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