Ni纯化树脂产品说明: 六聚组氨酸(6xHis)具有分子量小,鉴别方便,便于纯化等优点,在进行重组蛋白表达过程中,普遍作为检测和纯化的常用蛋白标签使用。金属(Ni)镍离子被螯合到固相支持物共价结合的反应性基团上,形成Ni-NTA(次氨基三乙酸)、Ni-IDA(亚氨基二乙酸),树脂能够特异性的与六聚组氨酸(6XHis)结合。当变性的或者非变性的带有His标签的融合蛋白溶液流经Ni亲和纯化柱时,带有His标签的融合蛋白结合在Ni-NTA纯化介质上,经过洗涤后,不带His标签的蛋白被洗涤下去,结合在Ni纯化树脂的融合蛋白经过一定浓度的咪唑或低PH缓冲液,洗脱条件非常温和,方便快捷的得到高纯度蛋白的同时,可以保持其天然结构和活性,获得的蛋白可以直接用于功能性检测。
主要特色
操作简便—蛋白可在变性/非变性条件下进行纯化,实验室常用仪器和试剂即可满足实验要求。 兼容性好:可兼容各类变性剂,还原剂等(可兼容10mM DTT) 纯度高:一步纯化即可以得到90%纯度的蛋白 结合能力强:最高蛋白结合量为20mg/ml
使用方法 1、离心收集500 ml表达目标蛋白的大肠杆菌,冻融或超声破菌于20 ml破菌缓冲液。破菌缓冲液: 20-50 mM Tris-HCl,pH 7.3-8.3,含0.25 M-0.5M NaCl,其它常用缓冲液为PBS。这一步可以适当加入PMSF作为蛋白酶抑制剂,但是不能使用EDTA。还原剂使用2 mM 2-ME,避免使用DTT,因为DTT会造成Ni/Co离子还原。 2、离心取上清,上样于预先平衡好的纯化柱(10倍柱体积上样缓冲液平衡),通常自然流速可以很好结合。少数情况下,流速过慢,可以使用硅胶管控制上样速度。 3、样品上完以后,使用破菌缓冲液洗柱10个柱体积,注意将纯化柱侧壁上的残留样品洗干净。 4、使用10-20倍柱体积洗杂缓冲液将杂蛋白从纯化柱上洗去,如果杂蛋白太多可以加大洗杂体积。洗杂缓冲液:破菌缓冲液中补加咪唑到终浓度20 mM。咪唑可以使用上样缓冲液配制成500 mM母液,用前加入。 5、洗杂结束以后,使用4-10倍柱体积洗脱缓冲液将目标蛋白洗脱。通常目标蛋白会在第二个柱体积中开始流出。洗脱缓冲液:上样缓冲液中补加咪唑到终浓度200 mM。 6、收集完成以后,使用10倍柱体积1% 醋酸冲洗纯化柱,再使用PBS/TBS平衡pH,大量蒸馏水水洗柱,最后加入5 ml 20%乙醇,保存在4 ℃,不要在-20 ℃冻结。
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