人间质干细胞诱导成软骨分化试剂盒
产品基本信息
Applied CellTM 人间质干细胞诱导成软骨分化试剂盒
基础培养基2-8℃，添加剂-20--80℃保存；
混合后2-8℃保存，3周内使用完毕
产品简介
人间质干细胞诱导成软骨分化试剂盒是埃泽思生物（Applied CellTM）自主研发的一款用于人类间质干细胞诱导分化成软骨的试剂盒，可用于骨髓、脐带、脂肪等组织来源的间充质干细胞的诱导成软骨分化。本产品仅限于科学研究，不能用于临床诊断、治疗，以及其他用途。
产品特性
产品内容
五、操作方法
1. 相关材料
• Xeno-Free 人间充质干细胞培养基（Applied Cell®:AC-1001003）
• 人间充质干细胞成软骨分化试剂盒（Applied Cell®:AC-1001028）
• 成软骨检测染液（Applied Cell®:AC-1001023）
• 细胞消化液（Applied Cell®:AC-1001024）
• 磷酸盐缓冲液(1×) （Applied Cell®: Cat.AC-1001037）
2. 实验准备
人间充质干细胞成软骨分化培养基的配制：
2.1. 在 2-8℃解冻人间充质干细胞成软骨分化添加剂，轻晃摇匀；
2.2. 将添加剂加入到人间充质干细胞成软骨分化基础培养基中（添加剂 10mL 与 90mL 基础培养基彻底混合）混匀，即为人类间充质干细胞成软骨分化培养基。人间充质干细胞成软骨分化培养基可 在 2-8℃稳定储存 2-3 周。
注意：人间充质干细胞成软骨分化添加剂只能在 2-8℃解冻，待添加剂加入到培养基以后，请用培养基润洗添加剂试管 1-2 次，因添加剂量较少可防止添加剂粘附在试管壁上造成损失。
3. 实验操作
3.1. 诱导成软骨球
3.1.1. 诱导成软骨分化实验之前，用细胞消化液消化后计数；
3.1.2. 分配 0.5 mL 细胞悬液（2-3×105 个细胞）到 15mL 或 50mL 离心管中，300×g，离心 5min；
3.1.3. 吸掉上清，用 2-5mL 人间充质干细胞成软骨分化培养基重悬沉淀。
3.1.4. 离心后拧松离心管盖便于气体交换，置于 37℃，5%CO2 培养箱中培养，第 2 天，细胞团应在离心管底部呈球形的团状；
注意：离心后不需要吸掉上清液，且不要随意晃动离心管。
3.1.5. 自接种时间开始计算，每天更换人间充质干细胞成软骨分化培养基；
注意：每次换液时，轻轻的摇动离心管或轻弹离心管底部确保细胞球没有粘附到管壁上。第 4-5 天即会看到非常明显软骨球。
3.1.6. 15-21 天，软骨球停止生长，收获软骨球：吸掉人间充质干细胞成软骨分化培养基，用
PBS 洗 1 次。
3.2. 成软骨检测染液染色
3.2.1. 清洗：软骨球用 PBS 清洗 2 次；
3.2.2. 固定：加 2mL 细胞固定液，固定 30min，水洗 2 次；
3.2.3. 染色：成软骨检测染液（AC-1001023）染色 5min；
3.2.4. 洗涤：dH2O 洗去多余的染料，软骨球呈深蓝色。切片染色：
3.2.5. 复水：将诱导分化的软骨球切片浸泡在 100% (vol/vol) 乙醇中 2×5 min， 95% (vol/vol) 乙醇中 1×2min，70% (vol/vol)乙醇中 1×2 min；
3.2.6. 用流动的水冲洗 30s；
3.2.7. 成软骨染料染色 5min；
3.2.8. 用 dH2O 洗去多余的染料；
3.2.9. 脱水：浸泡在 95% (vol/vol) 乙醇中 2×5min，在 100% (vol/vol) 乙醇中 2×5min;
3.2.10. 用二甲苯清洗 3×2 min；
3.2.11. 用中性树胶封片，用显微镜观察并拍照。
关键字： 间充质干细胞分化试剂盒;
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