产品描述 T7 High Yield Transcription Kit对体外转录体系进行了优化,能以带有T7启动子的线性化质粒、PCR产物或合成的DNA片段等为模板,在较短时间内通过体外转录反应获得大量RNA,操作简单便捷。本试剂盒转录合成的RNA可用于体外翻译、显微注射、RNA保护实验、探针杂交、RNAi和RNA结构和功能研究等。试剂盒NTP是单独提供,便于根据自己需求,在底物中加入修饰的核苷酸,制备生物素或染料标记的RNA。运输和保存干冰运输,-20℃保存。产品组分
产品用途体外RNA合成注意事项
为了避免RNase污染,实验中请穿实验服,戴一次性手套和口罩,使用RNase-Free耗材。
实验所用DNA模板建议先纯化,以避免RNase、蛋白及盐离子残留对反应体系的影响。
Transcription Buffer (10×)中含有亚精胺,在低温条件下会使DNA模板沉淀,需在室温条件下配制反应体系。
如果需要合成标记的RNA,请自备相应的修饰NTP。如果需要合成加帽RNA,请自备帽结构或帽类似物。
模板制备推荐使用以下几种类型的模板,模板可用TE缓冲液或RNase-free Water溶解。1、质粒模板带T7启动子的质粒可以作为转录模板,质粒的线性化程度和纯度会影响转录的产量及RNA的完整性。环状质粒由于没有有效的终止,会转录出不同长度的RNA产物,为了得到特定长度的RNA,质粒必须完全线性化,线性化的质粒请确保双链为平末端或5’端为突出结构。注:
RNase、盐离子、蛋白等会对转录反应产生影响,为提高转录实验的稳定性,建议质粒线性化后进行纯化,再作为模板使用。
为确保转录产物长度与预期一致,建议质粒酶切后切胶回收目的片段,以获得高纯度长度单一的线性化模板。
2、PCR产物模板带T7启动子的PCR产物可以作为体外转录模板。PCR扩增模板时将T7启动子(TAATACGACTCACTATAGGG)加在非编码区的上游引物的5’端。PCR产物可直接作为模板,无需纯化,但纯化后可以获得更高产量的RNA。注:
扩增完需要通过琼脂糖凝胶电泳确定产物的特异性和产量。
为了获得更多的RNA,建议对PCR产物纯化后作为模板。若电泳条带单一,可以使用PCR产物回收试剂盒纯化PCR产物后作为模板。若条带不单一,建议对目的条带切胶回收,回收产物作为模板。
3、合成的DNA模板合成的带有T7启动子的DNA片段也可以作为体外转录的模板。实验流程体外转录
试剂解冻:将Transcription Buffer (10×)室温下解冻和放置。将试剂盒其他组分振荡混匀,短暂离心收集于管底,冰上储存备用。
按下表比例配制反应体系。
注:a、Transcription Buffer (10 ×)中含有亚精胺,在低温条件下会使DNA模板沉淀,因此,需在室温条件下配制反应体系。b、若果进行多个反应,可以先混匀除模板和RNase Free Water以外的组分,分装到各个管里,再加入模板。c、反应体系通常为20 μL,可以根据需要按比例放大或缩小体系。d、对于长模板(>1000 bp),建议使用线性化质粒作为模板。e、推荐每20 μL体系使用0.1-1 μg模板。 3.混匀、离心、37℃反应2-3 h。注:建议使用PCR仪孵育,避免体系蒸发对实验造成影响。 4.(选做)向反应体系中加入1 μL Dnase I (1 U/μL),37℃孵育15 min,消化DNA模板。 5.合成的RNA经电泳分析后纯化,用RNase-free Water稀释至合适浓度,可用于下游实验。产物纯化1、酚/氯仿纯化a、加入160 μl RNase-free Water将产物稀释至180 μl。b、加入20 μl 3 M的醋酸钠(pH 5.2)到稀释后的产物中,用移液器充分混匀。c、加入200 μl的酚/氯仿混合液(1:1)进行抽提,室温10000 rpm离心5 min,将上层溶液(水相)转移至新的RNase-free EP管中。d、加入与水相等体积的氯仿抽提2次,收集上层水相。e、加入2倍体积的无水乙醇并混匀,-20℃孵育至少30 min,4℃ 15000 rpm离心15 min。f、弃上清并加入500 μl预冷的70%乙醇洗涤RNA沉淀,4℃ 15000 rpm离心,弃上清。g、开盖干燥2 min,加入20-50 μl RNase-free Water或其他缓冲液溶解RNA沉淀。h、-80℃保存。2、氯化锂纯化a、20 μL体系中分别加入30 μL RNase Free Water和30 μL Lithium Chloride Precipitation Solution (7.5 M),使Lithium Chloride的终浓度在2.5-2.8 mM之间。b、-20℃放置至少30 min(可以放置过夜)。c、12000 rpm离心15 min,去上清,收集沉淀。d、用预冷的70%乙醇洗2次,每洗一次,离心5 min,倒弃液体,收集沉淀。e、晾干RNA,RNase-free Water溶解后检测。3、柱纯化柱纯化可以去除蛋白和游离核苷酸。纯化前加入80 µl RNase Free Water将产物稀释至100 µl,再按柱纯化说明书进行纯化。4、磁珠纯化磁珠纯化可以去除蛋白和游离核苷酸。按磁珠纯化说明书进行纯化。RNA分析与定量1、凝胶电泳分析:转录产物可以使用变性琼脂糖凝胶进行电泳分析,评估产物的长度、完整性以及产量。2、紫外吸收法进行RNA定量:游离核苷酸会影响定量的准确性,采用此方法前请先进行RNA纯化。3、染料法进行RNA定量:用RiboGreen染料进行RNA定量,游离核苷酸不会影响定量,可以对纯化或者未纯化的反应产物中的RNA进行准确定量。常见问题及解决方案1、转录产物产量低 ①实验组模板中含有抑制反应的成分建议:重新对模板进行纯化,确定模板量及其完整性。②实验模板序列本身原因建议:加大模板投入量;延长反应时间;换用其他启动子和RNA聚合酶进行转录。2、短片段转录产量低 转录产物小于0.3 kb时,可以通过延长反应时间(4 h-过夜反应)或增加模板量来提高RNA产量。3、RNA产物片段与预期不符(1)RNA产物片段小于预期①模板序列中包含类似于T7 RNA聚合酶的终止序列。建议:尝试不同的RNA聚合酶。②模板中GC含量高形成高级结构。建议:可以加入SSB蛋白,以提高转录效率,或者使用42℃进行转录会提高转录产物的产量。③RNase污染。建议:实验过程中戴口罩、戴一次性手套并注意更换手套。使用一次性无酶枪头、EP管。实验试剂使用前离心,避免试剂在瓶盖或管口导致污染,开盖要小心,避免污染。(2)RNA产物片段大于预期 ①若是以线性化质粒为模板,可能质粒模板没有完全线性化,或者有义链3'端为突出结构。质粒作为模板必须完全线性化,即使存在小量的未线性化模板,也可能产生大量的长片段RNA产物。建议:重新线性化质粒,要确保线性化完全,并检查模板结构,确保有义链3'端不能是突出结构。②RNA存在未完全变性的二级结构。建议:使用变性胶来检测RNA产物。4、产物电泳拖尾现象①转录及纯化过程被RNase污染建议:使用RNase-free的枪头和EP管,实验中所用试剂都为RNase-free,戴一次性乳胶手套。②电泳过程中被RNase污染建议:电泳缓冲液用RNase-free Water配制,电泳槽和制胶器具用RNase-free Water浸泡,缩短电泳时间。③DNA模板被RNase污染。建议:重新纯化模板DNA。订购信息
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