背景[1-3]
Β淀粉样蛋白前体蛋白结合蛋白1抗体是一类可以特异性结合Β淀粉样蛋白前体蛋白结合蛋白1的多克隆抗体，主要用于Β淀粉样蛋白前体蛋白结合蛋白1的体外免疫学检测实验。
Β淀粉样蛋白前体蛋白指由定位于21号染色体长臂上的基因编码合成的一类蛋白质肽链，因其水解断裂后，可产生一种由40～42个氨基酸组成的称为淀粉样蛋白的肽链，所以被称为淀粉样蛋白前体，简称为APP。APP存在于身体的多种组织中，由于组成肽链的氨基酸数目不同，已发现至少有3种不同的APP，大脑中存在较多的是APP695。APP合成后随轴浆流转运，多分布在突触处。肽链的大部分在细胞外，为氨基端，细胞内留有较短的羧基端。
Β淀粉样蛋白前体蛋白结合蛋白1
β淀粉样蛋白(amyloid-β，Aβ)是由淀粉样前体蛋白(amyloid precursor protein，APP)经β-和γ-分泌酶的蛋白水解作用而产生的含有39～43个氨基酸的多肽。它可由多种细胞产生，循环于血液、脑脊液和脑间质液中，大多与伴侣蛋白分子结合，少数以游离状态存在。人体内Aβ最常见的亚型是Aβ1～40和Aβ1～42。在人脑脊液和血中，Aβ1～40分别比Aβ1～42的含量水平高10倍和1．5倍，Aβ1～42具有更强的毒性，且更容易聚集，从而形成Aβ沉淀的核心，引发神经毒性作用。
Aβ是由APP经β-和γ-分泌酶水解产生的。APP是一种在各种组织中广泛存在，并集中表达于神经元突触部位的膜蛋白质，Aβ片段即位于其跨膜区域。β-分泌酶首先在β位点将APP裂解为β-N端片段(sAPPβ)和β-C端片段，然后γ-分泌酶在β-C端片段的近N端跨膜区域水解释放出有39～43个氨基酸组成的Aβ肽段，此过程被称为APP的淀粉样降解途径，APP的非淀粉样降解途径是由α-和γ-分泌酶所介导水解生成。sAPPα、p3和α-C端片段，由于α-分泌酶的作用位点在Aβ区域，从而阻止了Aβ的产生。
Aβ的生成效率主要取决于APP及其水解酶的亚细胞定位。在稳定状态下，α-分泌酶主要分布在细胞膜上，β-分泌酶则主要定位于高尔基体外侧网络结构(tans-Golgi network，TGN)和内涵体中，γ-分泌酶的分布较广，在细胞膜和多种细胞器中均有发现。
应用[4][5]
用于T细胞在AD模型鼠中对海马神经元凋亡和再生的影响及机制分析研究
为探究T细胞在阿尔茨海默病（Alzheimer’s Disease,AD）发病机理中对脑海马神经元凋亡和再生的影响及其分子机制。
1. 建立模拟AD的BALB/c小鼠动物模型。包括免疫功能正常的模拟AD小鼠动物模型和T细胞免疫缺陷的模拟AD小鼠动物模型,并对这种新建立的动物模型进行病理学评价。
2. 利用所建立模拟AD的BALB/c小鼠动物模型,探讨T淋巴细胞在AD模型鼠中对小鼠脑海马神经元凋亡和再生的影响作用。
3. 应用荧光定量PCR技术,探究在AD模型鼠中T细胞对海马神经元凋亡和再生影响的可能分子机制。
方法：1.选取BALB/c正常小鼠（BALB/c-WT）和T细胞缺陷的BALB/c裸小鼠（BALB/c-nude）各24只,随机分为实验组和对照组。利用显微注射方法分别在实验组和对照组小鼠双侧海马CA1区注射寡聚态Aβ1-42和生理盐水（NS）。实验组又分为两组,即实验I组（BALB/c-WT+Ap1-42）和实验II组（BALB/c-nude+Ap1-42）,对照组也分对照I组（BALB/c-WT+NS）和对照II组（BALB/c-nude+NS）,每组12只,4组共48只。建立模拟AD的BALB/c小鼠动物模型。于造模后的第7d、21d二个时间点分批次分别取各组模型鼠的脑组织和外周血。
2. HE染色,在光镜下观察并比较实验组（Aβ1-42-injection）与对照组（NS-injection）注射部位的脑组织及周围的炎症反应情况；免疫组织化学显色检测Aβ1-42在实验组小鼠脑内沉积表现。
3. 利用免疫组织化学方法,于造模21d时,分别检测实验组和对照组小鼠海马神经元内与凋亡相关基因Bcl-2和Bax的表达情况；用TUNEL法进一步检测各组小鼠海马神经元发生凋亡的情况。
4. 采用同样方法,于造模7d时,用微管结合蛋白（Doublecortin,DCX）抗体特异性标记海马齿状回增殖的神经前体细胞,分别检测实验组和对照组小鼠脑海马神经前体细胞再生的情况。
5. 用荧光定量RT-PCR方法,分别检测并比较造模后的第7d和21d实验组与对照组小鼠外周血中的IL-2、IFN-γ的基因表达和脑组织IL-1β和TNF-α的基因表达情况。
6.应用Image pro-plus6.0图像分析系统软件,分别将各组测量所得的DCX、Bcl-2、Bax和TUNEL法标记的阳性产物平均光密度值,应用SPSS16.0统计分析软件,将数据分别进行单因素方差分析（One-way ANOVA）,进行组间多重比较；将荧光定量RT-PCR检测所得的基因表达数据作重复测量方差分析,不同时间两组比较用t检验；均以P<0.05,认为结果有统计学意义。
参考文献
[1]Neurobiological aspects of Alzheimer’s disease[J].Kanwaljit Chopra,Shubham Misra,Anurag Kuhad.Expert Opinion on Therapeutic Targets.2011(5)
[2]Presenilin-2 Mutation Causes Early Amyloid Accumulation and Memory Impairment in a Transgenic Mouse Model of Alzheimer’s Disease[J].Toshihiko Toda,Yoshihiro Noda,Genzo Ito,Masahiro Maeda,Takahiko Shimizu,Monica Fedele.Journal of Biomedicine and Biotechnology.2010
[3]Neuron Specific Toxicity of Oligomeric Amyloid-β:Role for JUN-Kinase and Oxidative Stress[J].Philip J.Ebenezer,Adam M.Weidner,Harry LeVine,III,William R.Markesbery,M.Paul Murphy,Le Zhang,Kalavathi Dasuri,Sun Ok Fernandez-Kim,Annadora J.Bruce-Keller,Elena Gavilán,Jeffrey N.Keller.Journal of Alzheimer’s Disease.2010(3)
[4]Evidence for the Involvement of Apoptosis-Inducing Factor–Mediated Caspase-Independent Neuronal Death in Alzheimer Disease[J].Wenfeng Yu,Naguib Mechawar,Slavica Krantic,Rémi Quirion.The American Journal of Pathology.2010(5)
[5]刘靖.T细胞在AD模型鼠中对海马神经元凋亡和再生的影响及机制分析[D].南方医科大学,2013.